Обговорення користувача:Hhgvft

Ласкаво просимо!

Основні засади Вікіпедії	Ласкаво просимо до україномовної Вікіпедії, Hhgvft!
Для чого ми розвиваємо Вікіпедію	Вітаємо Вас як нового учасника україномовного розділу Вікіпедії. Сподіваємось на плідну співпрацю з Вами над спільним відкритим проєктом. Зверніть увагу на наріжні принципи участі: сміливо редагуйте, а в конфліктних ситуаціях, якщо такі виникнуть, завжди розраховуйте на добрі наміри опонента. Можете скористатися шпаргалкою, якщо Ви ще не знайомі з основами вікірозмітки. Якщо виникли запитання щодо проєкту або потрібні якісь підказки, пошукайте відповідь на сторінці Довідки. Якщо відповіді на Ваше питання там немає, поставте його у нашій Кнайпі чи комусь із постійних дописувачів. Кнопка вставки підпису у вікні редагування На сторінках обговорень бажано ставити автоматичний підпис за допомогою чотирьох тильд (~~~~) або за допомогою позначки підпису у вікні редагування (зображено на малюнку). У статтях, написаних або редагованих Вами, підпис не ставиться. Ви також можете розповісти про свої інтереси на сторінці інтересів користувачів. Якщо у Вас виникнуть додаткові питання, можете звернутися за порадою до будь-якого користувача з цієї категорії. Бажаємо успіхів та якнайбільше творчого задоволення! Irrespective of your language skills, you are welcome to create your own user page, add interwiki links, upload images, correct data, discuss problems, communicate & cooperate with the community. Please, use language templates from Вікіпедія:Вавилон or create your own ones. You can ask for our help on the Community Portal (help).
Як створити статтю
Як редагувати статті
Ілюстрування статей
Потренуйтеся тут!
Правила і настанови
Стиль оформлення статей
Авторські права
Довідка
Користувачі, що допоможуть Вам
Словничок вікітермінів

-- Automatic welcomer (обговорення) 05:42, 17 червня 2024 (UTC) Стаття про водорость Ulva prolifera Ульва (лат. Ulva) — рід морських зелених водоростей родини Ульвові (Ulvaceae), що широко розповсюджені в помірних та субтропічних морях. Поширені у морях помірного та субтропічного поясу. Багато видів їстівні , відомі під назвою «морський салат». Види здебільшого зустрічаються як дикі водорості, хоча деякі з них культивуються в Японії , Кореї , Китаї та інших країнах. Морфологія та структура Багатоклітинне яскраво-зелене слоевище цієї водорості пластинчасте, можливо цілісне, розсічене чи гіллясте. Довжина талому становить середньому 0,3—1,5 метра. У його структурі розрізняють два ряди клітин, що тісно прилягають один до одного. В основі слані є великі клітини з ризоїдами , що утворюють підошву, за допомогою якої водорость прикріплюється до підводного субстрату. Клітини ульви зібрані у два шари. Кожна клітина має клітинну оболонку, клітинну мембрану, у цитоплазмі одне ядро та один пластинчастий хлоропласт. Клітини спеціалізуються на певних функціях: одні забезпечують процеси фотосинтезу, інші - прикріплення до поверхонь чи розмноження. Життєвий цикл і розмноження Можливий вегетативний та статевий способи розмноження цієї водорості. Часто із фрагментів організму з'являється нова рослина. Від основи ульви, точніше з її підошви можуть розвиватися молоді рослини. При статевому процесі відбувається злиття гамет із різних таломів. Життєвий цикл ульви включає два покоління - гаметофіт і спорофіт , які виглядають абсолютно однаково і мають схожу будову. Статеве розмноження може протікати як ізогамія або гетерогамія . Екологія та поширення Ульва поширена в морях помірного і субтропічного поясу, на глибинах до 5 метрів. Вона є теплолюбною та світлолюбною водорістю, що прикріплюється до дна за допомогою ризоїдів. Найбільш масове цвітіння Ulva prolifera зареєстровано в Жовтому морі біля узбережжя Китаю, де водорість спричиняє серйозні екологічні проблеми . Значення та використання Ульва відіграє важливу роль у морській екосистемі, збагачуючи моря киснем і слугуючи кормом для багатьох морських мешканців. Водорість багата на вітаміни, хімічні елементи, такі як залізо, марганець і йод, і використовується в їжу в багатьох країнах, зокрема в Японії та Кореї . Проблеми зелених припливів Зелені припливи , спричинені надмірним розростанням Ulva prolifera в Жовтому морі Китаю, відбуваються кожного літа з 2007 року. Зелені припливи є серйозною екологічною проблемою, яка включає вплив природних, антропогенних, фізико-хімічних факторів і факторів водоростей разом із потеплінням місцевої води. Динаміка цих факторів може пояснити раптовий розквіт U. prolifera біля східного узбережжя Китаю в 2007 році. Кожної весни, починаючи з 2007 року, U. prolifera спочатку з’являлися вздовж узбережжя Цзянсу разом із дрібними плаваючими водоростями, а потім мігрували на північ вздовж узбережжя Жовтого моря під впливом мусонів і океанічних течій, накопичуючись у прибережних водах на півострові Шаньдун у червні та липні, а потім поступово занепав. Аналіз метеорологічних і екологічних даних, а також місцевої аквакультурної діяльності переконливо підтверджує гіпотезу про те, що цвітіння U. prolifera в Жовтому морі походить із води біля узбережжя Цзянсу . [7] Завдяки розвитку аквакультури Porphyra yezoensis і надлишку поживних речовин, що використовуються для її росту, стан води стає придатним для цвітіння водоростей і зелених припливів, коли настають відповідні сезони. Після збору врожаю P. yezoensis і очищення мотузок, плотів та інших пристосувань, талломи U. prolifera були зіскоблені та викинуті фермерами. Вільно плаваюча U. prolifera продовжувала рости і за допомогою припливів і вітрів відносилася до північної частини Жовтого моря. [7] Така діяльність дає початкову популяцію таких організмів, які можуть розмножуватися та заселяти величезні території на вершині океану.

Посилене цвітіння водоростей на поверхні морської води становить екологічну небезпеку для прибережного підводного біома . Надмірне розтягнення поверхневих водоростей може блокувати проникнення сонячного світла нижче зараженої водної області, створюючи набагато мілкішу афотичну зону. Зникнення сонячного світла може бути фатальним для рослин і організмів, що живуть під поверхнею, яким потрібне сонячне світло. Фотосинтез фітопланктону буде сильно знижений через нестачу сонячного світла, викликану блокадою водоростей, що розростаються. Недостатнє первинне виробництво в океанському біомі є руйнівним для підтримки місцевої харчової мережі .

Крім того, дихання водоростей збільшується для такого вибуху водоростей у біомасі. Нестача кисню в місцевій акваторії згубна для всіх живих організмів. Водорості, викинуті на берег, також становлять небезпеку для навколишнього середовища під час деградації, оскільки виділяють у повітря шкідливий запах. Найбільший в історії зелений приплив, який стався у 2021 році, сприяв інноваціям у методах лікування. На відміну від традиційного методу утилізації врожаю, композицію мікробного комплексу спочатку розпилювали на врожай U. prolifera , що сприяє швидкому розкладанню, а потім ферментували та викидали в море. Наразі мало відомо про екологічні наслідки цих різних методів лікування. Щоб перевірити цю гіпотезу, проводять 60-денну інкубацію в лабораторії для моделювання двох методів розкладання U. prolifera , зосереджуючись на впливі деградації на якість води. У процесі розкладання свіжого U. prolifera протягом двох місяців переважало безперервне та повільне вивільнення РОМ, і концентрація РОМ у водному стовпі майже не зменшувалася протягом двох місяців. Метод попередньої утилізації також значно змінив структуру мікробної спільноти. Попереднє розкладання складами мікробного комплексу зруйнувало клітинні тканини U. prolifera та змінило його фізичний стан у морській воді з плаваючого на швидке відкладення, а також збільшило швидкість розкладання приблизно в 14 разів. Швидке розкладання вивільненої біологічно активної органічної речовини споживало значну кількість розчиненого кисню в місцевій морській воді, що потенційно може спричинити локальну гіпоксію та підкислення в короткостроковій перспективі. Обробка перед розкладанням U. prolifera може бути практичним і ефективним заходом проти розквіту U. prolifera . Після повної деградації попередньо розкладеної U. prolifera утворена розчинена органічна речовина може збільшити TA, щоб протистояти підкисленню. Загалом, у порівнянні з традиційним методом збирання-пакування-утилізації, обробка перед розкладанням-утилізація є ефективним і безпечним для навколишнього середовища методом утилізації U. prolifera «зеленого припливу», але його слід використовувати обережно.

[Матеріали та методи] Експериментальні матеріали Десять кілограмів свіжого U. prolifera було зібрано 29 липня 2021 року в Жовтому морі біля Циндао (120,37° сх.д., 36,06° пн.ш.), коли спалахнув «зелений приплив». Солоність морської води була виміряна на рівні 31,0 за допомогою кондуктометра, а pH морської води був виміряний на рівні 7,98 за допомогою pH-метра в лабораторії. Було відібрано U. prolifera смарагдово-зеленого кольору без «білого забарвлення», промито морською водою на місці для видалення домішок і попередньо культивовано в лабораторії (20°C) протягом 24 годин. Термометром на місці було виміряно температуру морської води 20,2°C. Ці десять кілограмів свіжого U.prolifera використовували для експерименту з природним розкладанням.

Щоб отримати попередньо розкладені зразки U. prolifera , урожай U. prolifera збирали у ферментаційній установці, де розпилювали композицію мікробного комплексу, що складається з різних мікроорганізмів, таких як бацила та дріжджі. Після повного змішування U. prolifera ферментували у ферментаційних резервуарах при температурі близько 30°C протягом більше 7 днів. Для експерименту були відібрані зразки, колір і фізичний стан яких були відносно однорідними. Зразки зберігали в лабораторії при постійній температурі (20°C) протягом 24 годин без будь-якої спеціальної обробки перед початком експерименту.

Близько 200 літрів морської води було зібрано біля узбережжя Циндао, далеко від зливу стічних вод та інших зон впливу людини. Його вилили у велике відро з ПНД і залишили на 12 годин, щоб видалити плаваючі предмети та осісти осад. Потім морську воду фільтрували через сито з розміром пор 20 мкм, щоб видалити частки та морський планктон і зберегти більшість мікроорганізмів на місці. Відфільтровану морську воду витримували при постійній температурі протягом ночі до досягнення температури інкубації (20°С).

Як воду, так і мікробні зразки відбирали через 0 год, 12 год, 24 год (1 день), 36 год, 3 день, 5 днів, 8 днів, 12 днів, 20 днів, 35 днів і 60 днів. Зразки на лужність збирали в скляні пляшки на 100 мл і аналізували якомога швидше. Один літр води збирали з кожної паралельної експериментальної групи в кожен інтервал часу та аналізували на DOC, DON, NO 3 - , NO 2 - і NH 4 + . Зразки води спочатку фільтрували за допомогою фільтрів GF/F (Whatman, попереднє спалювання при 450°C) з розміром пор 0,7 мкм для видалення твердих часток, потім за допомогою фільтрів PC (Millipore) з розміром пор 0,2 мкм і, нарешті, з фільтрами PDVF (Millipore) з розміром пор 0,1 мкм. Зразки води зберігали в попередньо очищеній пляшці з поліетилену високої щільності (HDPE) об’ємом 1 літр і заморожували при -20°C. Відфільтровану мембрану PC-фільтра діаметром 0,2 мкм складали та поміщали в пробірку для кріоконсервації, пізніше змочували в РНК (Thermo Co.) і швидко зберігали в холодильнику при -80°C для секвенування 16S рДНК.

Аналітичні методи

Зразки води розморожують і доводять до кімнатної температури, а потім добре струшують. Суму концентрацій нітрату та нітрату вимірювали хемілюмінесцентним методом за допомогою аналізатора NOx (TELEDYNE, API-200E) з точністю 3% ( Yan et al., 2021 ). Концентрацію нітритів визначали колориметрично. Концентрацію амонію визначали методом окислення гіпобромітом натрію ( Grasshoff et al., 2009 ). Концентрація розчиненого неорганічного азоту (DIN) була сумою концентрацій нітрату, нітриту та амонію. Загальний розчинений азот (TDN) визначали за допомогою методу окислення лужним персульфатом калію ( Grasshoff et al., 2009 ). Розчинений органічний азот (DON) був різницею між TDN і DIN. DOC вимірювали за допомогою аналізатора загального органічного вуглецю (Shimadzu, TOC-L) із CRM (Hansel Lab) як внутрішнім стандартом для виправлення повідомлених даних DOC. ТА визначали методом гран-титрування на автоматичному потенціометричному титраторі з точністю 0,1 %.

Для спостереження за клітинами U. prolifera використовувався мікроскоп Echo Laboratories RVL-100-G з вбудованою камерою . Органічну лужність визначали шляхом зворотного титрування ( Cai et al., 1998 ) з використанням автоматичного точкового титратора (ZDJ-5B, Shangai INESA Scientific Instrument Co., Ltd).

Матрицю випромінювання збудження флуоресценції (EEM) зразків води вимірювали в 1-см кварцовій кюветі за допомогою спектрофлуорометра (Hitachi, F-4600) з кроком 5 нм, де довжина хвилі збудження була між 200 і 450 нм, а випромінювання довжина хвилі була між 250 і 580 нм. Швидкість сканування становила 1200 нм/хв. Для кожного зразка EEM віднімали з води Milli-Q. УФ-поглинання вимірювали за допомогою УФ-спектрофотометра (Shimadzu, UV-1900). Потім було виконано моделювання за допомогою паралельної декомпозиції факторів (PARAFAC) у R (Mathworks) за допомогою інструментарію staRdom ( Pucher та ін., 2019 ).

Для аналізу структури бактеріальної спільноти ген 16S рДНК був ампліфікований за допомогою праймерів, націлених на гіперваріабельні області V3-V4 341F (CCTAYGGRBGCASCAG) і 806R (GGACTACVSGGGTATCTAAT). ДНК повного генома зі зразків була виділена Shenzhen Weikemeng Technology Group Co, Ltd за допомогою методу CTAB. Продукти суміші ПЛР очищали за допомогою набору для екстракції гелю Qiagen (Qiagen, Німеччина), а амплікони секвенували на платформі Illumina MiSeq.

Обробка та аналіз даних Для проведення статистичного аналізу даних використовувався SPSS (statistics 26). Дисперсійний аналіз застосовувався для вивчення статистичних відмінностей у параметрах двох методів обробки. Аналіз біоінформатики проводився відповідно до «Посібника з мікробіоми ґрунту Атакама» Qiime2docs разом із налаштованими програмними скриптами (

Результати Морфологічні відмінності свіжої та попередньо розкладеної Ulva prolifera Колір свіжої U. prolifera був смарагдово-зелений з унікальним запахом морських водоростей. Свіжий U. prolifera був волокнистим, порожнистим і плавав у морській воді. Розкладений U. prolifera був жовто-коричневим і мав сильний кислий запах, але все ще можна було побачити відносно повну форму тіла водорості. Після опускання в морську воду розкладений U. prolifera осів на дно.

Під мікроскопом структура клітин свіжої U. prolifera була недоторканою, тоді як структура розкладеної U. prolifera була пошкоджена. Після 35 днів деградації в лабораторії структура свіжого U. prolifera була частково розкладена, але деякі волокна все ще були видні, а колір став жовтим і білим. Під мікроскопом було виявлено, що клітинна структура пошкоджена і водорості загинули. Однак після 35 днів розкладання в розкладеному U. prolifera не було волокнистої структури . Більшість водоростей розклалися на розчинену органічну речовину та сміття. Після 60 днів розкладання більшість свіжих і розкладених U. prolifera були повністю розкладені, а тканини візуально не спостерігалися.

Зміни поживних елементів азоту під час розкладання

Для процесу розкладання свіжого U. prolifera рівень нітриту завжди був нижчим за 0,10 мкмоль/л протягом 60 днів. Концентрація амонію незначно зросла через 12 годин і 5 днів (0,34 і 0,84 мкмоль/л відповідно) і залишалася нижче 0,10 мкмоль/л протягом решти часу. З 5 -го по 12 -й день вміст нітратів дещо підвищувався , але максимальна концентрація становила лише 1,64 мкмоль/л ( рис. 2 ). За 60 днів деградації концентрація ДОН в 13-955 разів перевищувала концентрацію ДІН. Мінералізація органічної речовини з утворенням неорганічних поживних речовин була незначною. Висновок Ульва, завдяки своїм морфологічним особливостям та екологічній ролі, є важливою складовою морських екосистем. Хоча вона має значний позитивний вплив, зокрема в харчовій промисловості, неконтрольоване зростання водоростей може спричинити серйозні екологічні проблеми. Ефективне управління її популяціями є важливим завданням для збереження морських біомів і економічного розвитку прибережних районів